線粒體活性氧產生速率(ROS)檢測試劑盒說明書

熒光法 100T/96S

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

活性氧(Reactive oxygen species, ROS)包括超氧自由基、過氧化氫、及其下游產物過氧化物和羥化物等，研究表明，機體 95％以上的活性氧（ROS）都來自于線粒體，其失衡所致的氧化應激與細胞生長增殖、發育分化、衰老和凋亡以及許多生理和病理過程有關。

正常情況下，細胞內抗氧化防御系統與氧自由基處于平衡狀態，細胞內活性氧（ROS）水平維持在較低的生理范圍；在病理情況下，細胞內抗氧化系統與氧自由基的平衡被打破，細胞內活性氧水平過多，就可破壞線粒體酶類、脂類和核酸，使機體出現氧化應激，同時，活性氧還可攻擊線粒體DNA 產生氧化損傷，導致線粒體ATP 合成減少、線粒體膜電位破壞等結構和功能變化。因此，通過檢測活性氧的變化來判斷線粒體的功能是否正常具有重要意義。

測定原理：

熒光探針-還原型二氯熒光素 (2', 7'-dichlorodihy drofluorescin diacetate, DCFH-DA)可擴散通過線粒體 膜，在線粒體內被酯酶水解，形成無熒光的 DCFH，DCFH 迅速與ROS 反應生成熒光物—氧化型二氯熒光素(2', 7'-dichlo rofluorescin, DCF)。 根據上述原理設計了利用熒光法直接定量檢測線粒體ROS 產生速率的方法。將熒光強度隨時間變化的數據點擬合，線性回歸直線斜率與ROS 產生的速率呈正比。

線粒體活性氧產生速率(ROS)檢測試劑盒 抗氧

組成：

自備儀器和用品：

多功能酶標儀、恒溫培養箱、分析天平、可調式移液器、冰、蒸餾水。

線粒體提取：

1、準確稱取 0.1g 組織或收集 500 萬細胞，加入 1ml 試劑一和 10μl 試劑三，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、將上述勻漿液于 600g（離心率），4℃離心 5min。

3、棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11000g，4℃離心 10min。

4、棄上清，沉淀中加入 200μl 試劑二重懸。

測定步驟：

1、多功能酶標儀預熱 30min 以上，調節激發光 499nm，發射光 521nm。

2. 在黑色不透光 96 孔板中加入下列試劑

孵育完成后，在 37℃恒溫下測定 10min 內熒光強度，激發波長 499nm，發射波長 521nm，記錄 10min 內的熒光值變化。

ROS 產生速率計算：

對采樣數據點即熒光強度隨時間的變化進行線性回歸擬合處理 ,計算出回歸系數,即直線斜率（k）。實際線粒體ROS 產生速率等于樣本熒光強度隨時間變化的數據點線性回歸直線斜率(k 測定)減去本底熒光強度隨時間變的數據點線性回歸直線斜率（k 空白）。

(1) 按樣本鮮重計算：每 g 組織線粒體每秒鐘熒光單位的變化,即u/ s/g 鮮重

ROS 產生速率(u/ s/g 鮮重)=(k 測定-k 空白)/(V 樣÷V 總×W）=10×(k 測定-k 空白)÷W

(2) 按樣本蛋白濃度計算：每毫克蛋白線粒體每秒鐘熒光單位的變化 u/ s/mg prot。

ROS 產生速率(u/ s/ mg prot)=(k 測定-k 空白)/(V 樣÷V 總×Cpr）=10×(k 測定-k 空白)÷Cpr

V 樣：加入樣本體積，0.02 ml；V 樣總：懸液體積，0.2 ml；W: 樣本鮮重，g；Cpr: 樣本蛋白濃度，mg/ml。

線粒體活性氧產生速率(ROS)檢測試劑盒 抗氧