內切-β-1，4-葡聚糖酶（Cx）活性測定試劑盒說明書

分光光度法 50 管/24 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

Cx（EC3.2.1.4）存在于細菌、真菌和動物體內，是纖維素酶系的組份之一，Cx主要作用于非晶態纖維素和水溶性纖維素衍生物，隨機水解糖苷鍵，將其分解成葡萄糖、纖維二糖、纖維三糖和其他寡聚體。

測定原理：

采用3,5－二硝基水楊酸法測定Cx催化羧甲基纖維素鈉降解產生的還原糖的含量。

內切-β-1 4-葡聚糖酶活性測定試劑盒糖代謝

組成：

自備儀器和用品：

可見分光光度計、水浴鍋、離心機、可調式移液器、1ml 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

樣品測定的準備：

1、細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴ 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1ml 提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次）；8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

2、組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

3、血清（漿）樣品：直接檢測。

測定步驟：

1、分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 540nm，蒸餾水調零。

2、加樣表（在EP 管中依次加入下列試劑）：

混勻，37℃準確水浴 2h

混勻， 90℃水浴 10min（蓋緊，防止水分散失），冷卻后，測 540nm 下吸光值A，計算ΔA=A 測定管-A 對照管。每個測定管需設一個對照管。

Cx 活性計算

1、標準條件下測定回歸方程為 y = 6.4078x - 0.0673；x 為標準品濃度（mg/ml），y 為吸光值。

2、血清（漿）Cx 活力的計算

單位的定義：每ml 血清（漿）每分鐘催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。

Cx 活力(μg /min/ml)= [1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反總]÷V 樣÷T

=14.305×(ΔA+0.0673)

3、細胞、細菌和組織中 Cx 活力的計算

（1） 按照蛋白濃度計算

單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。

Cx 活力(μg /min/mg prot)=[ [1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反總]÷(V 樣×Cpr) ÷T

=14.305×(ΔA+0.0673) ÷Cpr

（2） 按樣本鮮重計算

單位的定義：每g 組織每分鐘催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。

Cx 活力(μg /min /g 鮮重)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反總]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T

=14.305×(ΔA+0.0673) ÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。

Cx 活力(μg /min /10⁴ cell)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反總]÷(500×V 樣÷V 樣總) ÷T

=0.0286×(ΔA+0.0673)

1000：1mg/ml=1000ug/ml；V 反總：反應體系總體積，0.55ml； V 樣：加入樣本體積，0.05 ml；V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時間，120 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/ml；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500 萬。

內切-β-1 4-葡聚糖酶活性測定試劑盒糖代謝