濾紙酶（Filter paper Activity，FPA）試劑盒說明書

分光光度法 50 管/24 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

纖維素酶是由微生物產生的多組分的酶系，能水解纖維素β-1,4 葡萄糖苷鍵生成葡萄糖，研究濾紙酶活力對纖維素酶的研究具有非常重要的意義。

測定原理：

濾紙酶水解濾紙產生的還原糖能與 3,5-二硝基水楊酸生成紅棕色氨基化合物，在 540nm 處有最大光吸收，在一定范圍內反應液顏色深淺與還原糖的量成正比，可測定計算得濾紙酶的活力。

濾紙酶試劑盒   糖代謝系列-常備現貨

組成：

自備儀器和用品：

天平、研缽、低溫離心機、可見分光光度計、1 ml 玻璃比色皿、恒溫水浴鍋。

酶液提?。?/span>

1. 組織：按照質量（g）：蒸餾水體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g，加入 1ml 蒸餾水）加入蒸餾水，冰浴勻漿后于 4℃，12000rpm 離心 10min，取上清置于冰上待測。

2. 細胞：按照細胞數量（10⁴ 個）：蒸餾水體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入 1ml提取液），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；然后 4℃，12000rpm離心 10min，取上清置于冰上待測。

3. 培養液或其它液體：直接檢測。

測定操作：

1. 根據樣本數量取兩倍數量的濾紙條和 Ep 管，每支Ep 管中放入一個卷狀濾紙條（注意要放入底部），作為底物。

2. 對照管：取 200μl 滅活的酶液，加入 500μl 試劑一，充分混勻，再加入放有濾紙條的 Ep 管中，標注為對照管。

3. 測定管：取 200μl 酶液，加入 500μl 試劑一，充分混勻，再加入放有濾紙條的 Ep 管中，標注為測定管。

4. 對照管和測定管同時置于 50℃水浴鍋中反應 30min。

5. 加入 800μl 試劑二，沸水浴 5min，自來水冷卻后取 1ml 于 1ml 玻璃比色皿中測定 540nm 處吸光值，分別記為A 對照管和A 測定管。

酶活性計算公式：

標準曲線：y = 0.2805x - 0.0255，R² = 0.9991

（1） 按照蛋白濃度計算

酶活性定義：在 50℃，pH4.6 條件下，每毫克蛋白每分鐘分解濾紙產生 1mg 葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。

FPA（U/mg prot）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V 反總÷（V 樣×Cpr）÷T

= 0.891×（△A+0.0255）÷ Cpr

（2） 按照樣本質量計算

酶活性定義：在 50℃，pH4.6 條件下，每克組織每分鐘分解濾紙產生 1mg 葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。

FPA（U/g 鮮重）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V 反總÷（W×V 樣÷V 樣總）÷T

= 0.891×（△A+0.0255）÷ W

（3） 按液體體積計算

酶活性定義：在 50℃，pH4.6 條件下，每毫升培養液每分鐘分解濾紙產生 1mg 葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。

FPA（U/ml）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V 反總÷V 樣÷T

= 0.891×（△A+0.0255）

（4） 按細胞數量計算

酶活性定義：在 50℃，pH4.6 條件下，每 10⁴ 個細胞每分鐘分解濾紙產生 1mg 葡萄糖所需的酶量為一個酶活力單位。

FPA（U/10⁴cell）=（△A+0.0255）÷ 0.2805×V 反總÷（V 樣×細胞數量（萬個）÷V 樣總）÷T

= 0.891×（△A+0.0255）÷ 細胞數量（萬個）

V 反總：反應總體積，1.5ml，V 樣：反應體系中加入樣本體積，0.2ml；V 樣總：加入提取液體積，1ml；

Cpr：樣本蛋白濃度，mg/ml；W：樣本質量，g；T：反應時間，30min

注意事項：

1. 用干凈的鑷子取出濾紙條，帶手套卷成卷放入Ep 管底部。

2. 樣本滅活時保證同一批樣本處理時間一致，建議沸水浴十分鐘。

3. 批量樣本測定之前先做 1-2 個樣本的預實驗，若吸光值超過 1.2，建議將樣本用蒸餾水稀釋后再進行測定，計算公式中乘以稀釋倍數。

4. 顯色后取檢測液時注意槍頭不要碰到濾紙條，以免帶入毛狀物，影響測定結果。

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