總膽gu醇（total cholesterol，TC）含量測定試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

TC 包括游離膽gu醇和膽gu醇酯。TC 是指組織中所有脂蛋白所含膽gu醇之總和。

測定原理：

利用酯酶催化膽gu醇酯水解生成游離膽gu醇（FC）和游離脂肪酸（FFA），從而把膽gu醇酯轉化為 FC；進一步利用膽gu醇氧化酶催化FC 氧化，生成△4-膽甾烯酮和H2O2；最后利用過氧化物酶催化 H2O2 氧化 4-氨基安替bi林和酚，生成紅色醌類化合物；在 500nm 有特征吸收峰，其顏色深淺與TC 含量成正比。

總膽gu醇含量測定試劑盒   脂肪酸系列

組成：

TC 標準品：液體 1ml×1 支，0.5μmol/ml，4℃保存。

自備儀器和用品：

可見分光光度計、水浴鍋、可調式移液槍、1ml 玻璃比色皿、異丙醇和蒸餾水。

具體產品的參數以收到產品說明書的參數為準

TC 的提取：

1、組織中TC 的提取：按照組織質量（g）：試劑一體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 試劑一）進行冰浴勻漿，8000g 4℃離心 10min，取上清，即TC 待測液。

2、細胞、細菌中TC 的提取：先收集 400-500 萬細胞或細菌到離心管內，棄上清，加 1ml 試劑一，超聲波破碎 1min（強度 20％，超聲 2s，停 1s），即TC 待測液。

3、血清（漿）等樣品：直接測定。

測定操作：

1. 分光光度計預熱 30 min，調節波長到 500 nm，蒸餾水調零。

2. TC 工作液的配制：臨用前，吸取約 0.8ml 試劑二分別加入試劑三和試劑四瓶中，充分溶解后再全部轉移回試劑二瓶中，充分混勻，TC 工作液置于 37℃水浴 10min。用不完的工作液 4℃保存一周。

3. 標準管：依次在 1ml 玻璃比色皿中加入 100μl FC 標準液和 900μl TC 工作液，混勻，37℃靜置 3h 后于500nm 測定A 標準管。

4. 測定管：依次在 1ml 玻璃比色皿中加入 100μl FC 待測液和 900μl TC 工作液，混勻，37℃靜置 3h 后于500nm 測定A 測定管。

5. 空白管： 依次在 1ml 玻璃比色皿中加入 100μl 試劑一和 900μl TC 工作液，混勻，37℃靜置 3h 后于500nm測定A 測定管。

注意：標準管和空白管只需測定一次。

計算公式：

1. 血清（漿）中TC 含量：

TC（μ mol /dL）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）×100

= 50×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）

C 標準液：0.5μmol/ml；100 ml：1dL=100 ml。

2. 組織中TC 含量：

(1) 按樣本蛋白濃度計算

TC（μ mol/mg prot）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷Cpr

= 0.5×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷Cpr

(2) 按樣本質量計算

TC（μ mol / g 鮮重）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷W

= 0.5×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷W C 標準液：0.5μmol/ml；樣本蛋白濃度，mg/ml；W：樣本質量，g/ml

3. 細胞、細菌中TC 含量：

TC（μ mol /10⁴ cell）= C 標準液×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷細菌或細胞（10⁴ cell /L）

= 0.5×（A 測定管-A 空白管）÷（A 標準管-A 空白管）÷細菌或細胞（10⁴ cell /L） C 標準液：0.5μmol/ml。

注意事項：

zui低檢出限為 1nmol/ml。

總膽gu醇含量測定試劑盒   脂肪酸系列